外泌體綠色熒光標(biāo)記染料(PKH67)
Exosome Green Fluorescent labeling dye(PKH67)
產(chǎn)品編號 | 產(chǎn)品名稱 | 包裝規(guī)格 |
NW3217 | 外泌體綠色熒光標(biāo)記染料(PKH67) | 20μL(1mM) |
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產(chǎn)品簡介:
熒光染料PKH67 是?種可對體外和體內(nèi)細(xì)胞示蹤的綠色熒光染料,通過與膜結(jié)構(gòu)的脂質(zhì)分子結(jié)合到細(xì)胞膜脂質(zhì)區(qū)域上。PKH67對細(xì)胞毒性較小,熒光背景低,脂溶性高,能夠輕易穿透細(xì)胞膜,有著強(qiáng)而穩(wěn)定的綠色熒光。該試劑可以在染色過程中增加染色效率,同時(shí)維持細(xì)胞活力??捎糜谕饷隗w的標(biāo)記染色實(shí)驗(yàn),監(jiān)測細(xì)胞吞噬作用。
產(chǎn)品組成:
組分 | 名稱 | 規(guī)格 |
A | PKH67 linker(for green fluorescent cell labeling) | 20 μL |
B | Diluent C(for General Membrane Labeling) | 200 μL |
熒光波長:λex 490 nm;λem 502 nm
保存條件:
2-8℃避光(一年有效)
產(chǎn)品使用:
一、外泌體蛋白定量:
取適量外泌體進(jìn)行 BCA 蛋白濃度測定以確定外泌體蛋白量;
二、染料工作液制備:
用“Diluent C”將“PKH67 linker(for green fluorescent cell labeling)” 儲存液稀釋10倍,配制濃度為100 μM 的染料工作液(避光操作,工作液應(yīng)根據(jù)實(shí)驗(yàn)用量適當(dāng)配制,現(xiàn)配現(xiàn)用);
三、外泌體染色:
1. 在外泌體中加入染料工作液,建議加入劑量如下:
外泌體蛋白量 | 加入染料工作液劑量 |
10 - 200 μg | 50 μL |
200 - 500 μg | 100 μL |
500 - 1000 μg | 200 μL |
2. 加入染料工作液后將離心管蓋緊,通過渦旋振蕩器混勻1 min,再靜置孵育10min;
3. 向孵育后的外泌體-染料復(fù)合物中加入10 mL的1×PBS混勻;
4. 按照外泌體提取方法再次提取外泌體以去除多余染料;
5. 取200μL 1×PBS重懸沉淀物,沉淀即為染色后的外泌體。
注意:過度染色會導(dǎo)致外泌體膜完整性喪失,最佳PKH67染料/外泌體用量需根據(jù)自身實(shí)驗(yàn)而決定。
注意事項(xiàng):
1、PKH67 母液易水解,建議分裝保存,分裝后用封口膜密封保存;
2、PKH67 工作液應(yīng)現(xiàn)配現(xiàn)用,不能提前配制,否則將影響染色效果;
3、PKH67 溶解液在較低溫度下會凝固而粘在管底內(nèi),可以 37℃水浴片刻至全部融解后使用。
常見問題:
1. 建議用于染料標(biāo)記的外泌體原始濃度達(dá)到 0.5~1 μg/μL。外泌體濃度過低實(shí)驗(yàn)失敗風(fēng)險(xiǎn)較高。
2. 外泌體染色步驟中去除游離染料的步驟必不可少,以避免游離染料對后期實(shí)驗(yàn)的干擾。這一步相當(dāng)于重新提取外泌體,所有外泌體提取純化方式都適用。
3. 染料標(biāo)記外泌體與細(xì)胞共孵育的培養(yǎng)條件盡可能使用無血清培養(yǎng)基,以提高細(xì)胞對染料標(biāo)記外泌體的攝取效率,共孵育參考時(shí)長為2~24 h。
4. 本染料也可用于細(xì)胞膜染色,參考劑量染料濃度為2 μM,細(xì)胞濃度為1×107 cells/mL。
5. 由于外泌體染色效率難以達(dá)到100%,且在去除游離染料過程中無法避免外泌體的損失,因此,建議制備2倍于共孵育實(shí)驗(yàn)所需外泌體量以進(jìn)行染料標(biāo)記實(shí)驗(yàn)。
本產(chǎn)品僅用于生命科學(xué)研究,不得用于醫(yī)學(xué)診斷及其他用途!
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20μL(1mM) | ||
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25T |