BbvCI

產品簡介：

BbvCI來源于短芽孢桿菌(Bacillus brevis) (L. Ge)的BbvCI基因，經大腸桿菌重組表達獲得。BbvCI屬于Type IIA 類限制酶，以異源二聚體形式存在，由兩個不同的催化亞基構成，每個亞基具有獨立的切割位點。BbvCI識別并切割非回文序列CCTCAGC(-5/-2)，形成5'端3堿基突出的粘性末端。BbvCI使用Cutone?反應緩沖液，可與其他FastCut?系列限制酶進行雙酶切，但不建議長時間酶切（超過3 h），以避免產生星號活性。

識別位點：

CCTCAGC
5'...C C↓T C A G C...3'
3'...G G A G T↑C G ...5'

產品組成：

保存條件: 

-20℃保存，2年有效。

建議反應條件：

1× CutOne? Buffer；

37℃溫育；

參照“DNA酶切流程”配制反應體系。

失活條件：

80℃溫育20 min。

甲基化敏感性:

對于被 CpG 甲基化的 DNA，剪切可能受阻。

活性定義:

1活性單位 (U) 是指在激活劑存在下，50 μl反應體系中，37℃ 1 h 內完全酶切1 μg λDNA 所需的酶量。

功能活性檢測：

37℃下，2 U BbvCI能夠在15 min內完全消化1 μg λDNA。

超長時間溫育檢測：

37℃下，將2 U BbvCI與1 μg λDNA共同溫育3 h，未檢測到其他核酸酶污染或星號活性引起的底物非特異性降解。延時酶切可能出現星號活性。

酶切-連接-再酶切檢測：

37℃下，使用2 U BbvCI消化底物，回收酶切產物。在22℃下使用適量 T4 DNA Ligase (Fast)可以將＜10%的酶切產物重新連接。將連接產物再次回收后，使用相同的內切酶可以重新切開95%以上連接產物。

使用方法：

1. DNA酶切流程

① 在冰上按如下建議的加樣順序配制反應體系：

a. DNA 底物中應不含苯酚、氯仿、乙醇、EDTA、洗滌劑或高濃度鹽，否則將會影響BbvCI酶活性；

② 輕柔吸打或輕彈管壁以混勻（切勿渦旋），然后瞬時離心以收集掛壁液滴；

③ 37℃溫育1~3 h；

④ 80℃溫育20 min即可使酶失活，停止反應，或者通過吸附柱或苯酚/氯仿純化終止反應。

不同DNA中的酶切位點數量

甲基化修飾影響

在不同反應緩沖液中的活性

注：活性數據來自限制酶標準反應體系下的檢測。

注意事項：

1.      反應體系中加入的酶體積不應超過總體積的10%，避免酶中過多的甘油引起星號活性；

2.      限制性內切酶存儲緩沖液中的添加劑（例如甘油、鹽）與底物溶液中的污染物（例如鹽、EDTA或乙醇等）相同，反應體積越小，酶切反應抑制效應越強;

3.      為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

相關常規限制性內切酶產品：