BsiWI
產品編號 | 產品名稱 | 包裝規格 | 價格 |
NBS8220 | BsiWI | 300 U | 300 |
產品簡介:
BsiWI 屬于 Type IIP 型限制酶,識別回文序列,經過優化的反應 Buffer 使 BsiWI 最大限度發揮功能,同時反應緩沖液包含重組白蛋白,其可增強多種酶的穩定性。
識別位點:
CGTACG
5'...C ↓ G T A C G...3'
3'...G C A T G ↑ C...5'
同裂酶:PspLI, Pfl23II
注:同裂酶對于不同的甲基化修飾可能具有不同敏感性。
產品組成:
組分 | 規格 |
BsiWI (10 U/μl) | 30 μl |
10× Cut Buffer C | 1 ml |
保存條件:
-20℃保存,2年有效。
建議反應條件:
1× Cut Buffer C;
55℃溫育;
參照“DNA 酶切流程”配制反應體系。
本品在37℃進行酶切反應時,有25~50%的活性。
本品在CutOne? 反應緩沖液中,有25~50%的活性。
失活條件:
80℃溫育20 min。
甲基化敏感性:
對于被 CpG 甲基化的 DNA,剪切可能受阻。
活性定義:
1 活性單位 (U) 是指在 50 μl 反應體系中,55℃ 1 h內完全酶切 1 μg p615 所需的酶量。
超長時間溫育檢測:
最適反應溫度下,將10 U BsiWI與1 μg p615共同溫育16 h,未檢測到其他核酸酶污染或星號活性引起的底物非特異性降解。
酶切-連接-再酶切檢測:
最適反應溫度下,使用10 U BsiWI消化底物,回收酶切產物。在22℃下使用適量 T4 DNA Ligase (Fast)可以將酶切產物重新連接。將連接產物再次回收后,使用相同的內切酶可以重新切開連接產物。
使用方法:
1. DNA酶切流程
① 在冰上按如下建議的加樣順序配制反應體系:
ddH2O | up to 50μl |
10× Cut Buffer C | 5μl |
底物DNAa | 1μg |
BsiWI (10 U/μl) | 1μl |
Total | 50μl |
a. DNA 底物中應不含苯酚、氯仿、乙醇、EDTA、洗滌劑或高濃度鹽,否則將會影響BsiWI酶活性;
② 輕柔吸打或輕彈管壁以混勻(切勿渦旋),然后瞬時離心以收集掛壁液滴;
③ 55℃溫育15 min~1 h;
④ 80℃溫育20 min即可使酶失活,停止反應,或者通過吸附柱或苯 酚/氯仿純化終止反應。
不同DNA中的酶切位點數量
λDNA | ΦX174 | pBR322 | pUC57 | pUC18/19 | SV40 | M13mp18/19 | Adeno2 |
1 | 2 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 5 |
甲基化修飾影響
Dam | Dcm | CpG | EcoKI | EcoBI |
無影響 | 無影響 | 剪切受阻 | 無影響 | 無影響 |
注意事項:
1. 反應體系中加入的酶體積不應超過總體積的10%,避免酶中過多的甘油引起星號活性;
2. 限制性內切酶存儲緩沖液中的添加劑(例如甘油、鹽)與底物溶液中的污染物(例如鹽、EDTA或乙醇等)相同,反應體積越小,酶切反應抑制效應越強;
3. 為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。
相關常規限制性內切酶產品:
產品編號 | 產品名稱 | 包裝規格 |
100 U | ||
500 U | ||
50 U | ||
250 U | ||
300 U | ||
200 U | ||
500 U | ||
250 U | ||
500 U | ||
200 U | ||
250 U | ||
500 U | ||
250 U | ||
1000 U | ||
500 U |