NADPH氧化酶(NAO)活性檢測試劑盒 微板法
產品編號 | 產品名稱 | 包裝規格 | 價格 |
NBS8103-48T | NADPH氧化酶(NAO)活性檢測試劑盒 微板法 | 48T | 4490 |
產品簡介:
NADPH氧化酶(NAO)是一個典型的膜蛋白,催化NADPH氧化生成NADP+,并將電子傳遞給氧原 子從而產生超氧陰離子。廣泛存在于動物、植物和真菌中。該酶異常可導致人慢性肉芽腫病(GCD),在植物中,該酶與其抗病性和各種脅迫有密切關系。
NADPH氧化酶(NAO)將NADPH氧化為NADP+的同時生成超氧陰離子(O2.-),接著與顯色劑反應 生成水溶性的黃色物質。對照通過添加該酶的特異性抑制劑DPI排除背景值。最終檢測生成的有色物質在 450nm 處的吸光值,即可計算得出NAO酶活性大小。
保存條件:
-20℃保存,六個月有效。
產品組成:
組分 | 規格 | 保存 | 備注 |
提取液 | 60mL×1 瓶 | 2-8℃保存 | |
試劑一 | 0.25mL×1 瓶 | -20℃保存 | 若凝固可放置室溫或25℃水浴溶解。 |
試劑二 | 1mL×1 瓶 | -20℃保存 | |
試劑三 | 粉末mg×2支 | -20℃保存 | 用前甩幾下或離心使粉劑落入底部,分別加0.55mL蒸餾水溶解備用。用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復凍融,三天內用完。 |
試劑四 | 1mL×1 支 | -20℃保存 |
產品使用:
建議正式實驗前,選取 2 個樣本做預測定,了解實驗樣品情況,熟悉流程,避免樣本和試劑浪費!
一、樣本準備:
(a) 組織樣本:取約0.1g組織,加入1mL提取液,在4oC或冰浴進行勻漿(或使用各類常見勻漿器)。 4oC×12000rpm 離心10min,取上清作為待測液;
【注】:若增加樣本量,可按照組織質量(g):提取液體積(mL)為1:5~10的比例進行提取。 (b) 細菌/細胞樣本:先收集細菌或細胞到離心管內,離心后棄上清;取約500萬細菌或細胞加入1mL 提取液,超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率200W,超聲3s,間隔10s,重復30次);12000rpm 4℃離 心10min,取上清,置冰上待測。
【注】:若增加樣本量,可按照細菌/細胞數量(104):提取液(mL)為500~1000:1的比例進行提取。
(c) 液體樣品:直接檢測;若渾濁,離心后取上清檢測。
二、上機檢測:
(a) 酶標儀預熱30min以上,設定溫度37℃,調節波長至450nm。
(b) 所有試劑解凍至室溫(25℃)。
(c) 在96孔板中依次加入:
試劑名稱(μL) | 測定管 | 對照管 |
樣本 | 20 | 20 |
提取液 | 150 | 145 |
試劑一 | 5 | |
37℃孵育5min(可能會產生沉淀,但不影響后續測定) | ||
試劑二 | 10 | 10 |
試劑三 | 10 | 10 |
試劑四 | 10 | 10 |
37℃避光孵育20min,于450nm讀取吸光值A,ΔA=A測定-A對照。 | ||
【注】若ΔA的值在零附近,可以延長反應時間T(如至40min或更長),則改變后的反應時間T需代入公式重新計算。
三、含量計算:
1、按樣本蛋白濃度計算:
酶活定義:每毫克組織蛋白每分鐘在反應體系中使450nm處吸光值變化0.01為一酶活單位。
NAO(ΔOD450/min/mg prot)=ΔA÷(V1×Cpr)÷0.01÷T=250×ΔA÷Cpr
2、按樣本鮮重計算:
酶活定義:每克組織每分鐘在反應體系中使450nm處吸光值變化0.01為一酶活單位。
NAO(ΔOD450/min/g 鮮重)=ΔA÷(W×V1÷V)÷0.01÷T=250×ΔA÷W
3、按細菌或細胞密度計算:
酶活定義:每1萬個細菌或細胞每分鐘在反應體系中使450nm處吸光值變化0.01為一酶活單位。
NAO(ΔOD450/min /104 cell)=ΔA÷(500×V1÷V)÷0.01÷T=0.5×ΔA
V---加入提取液體積,1mL
V1---加入樣本體積,0.02mL
T---反應時間,20min
W---樣本質量,g
500---細胞或細菌,萬
D---稀釋倍數,未稀釋即為1
Cpr---樣本蛋白質濃度,mg/mL
注意事項:
1. 為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。
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產品編號 | 產品名稱 | 包裝規格 |
48T | ||
96T | ||
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100T | ||
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48T | ||
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24T | ||
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